Главная  //  Научные статьи  //  Новые ферменты  //  Эндонуклеаза рестрикции ZraI из Zoogloea ramigera 11 узнает 5'-GAC^GTC-3'

Эндонуклеаза рестрикции ZraI из Zoogloea ramigera 11 узнает 5'-GAC^GTC-3'

 

В. С. Дедков, С. А. Синичкина, Д. В. Попиченко, С. X. Дегтярёв

Биотехнология, 2001, № 6, c 3-7

 

Из природных изолятов нами выделен продуцент эндонуклеазы рестрикции (рестриктазы), идентифицированный как вид бактерии Zoogloea ramigera 11, а его рестриктаза была названа ZraI. Описан способ очистки фермента и определения его активности. Показано, что фермент ZraI расщепляет ДНК с образованием тупых концов и может найти широкое применение в генетической инженерии.

 

Эндонуклеаза рестрикции типа II (рестриктаза) AatII из штамма бактерии Acetobacter aceti узнает и расщепляет последовательность 5'-GACGT↓C-3' в составе двухцепочечной ДНК [1, 2]. Этот фермент уже более 10 лет широко применяется в различных биотехнологических работах, так как его сайт узнавания присутствует во многих бактериальных и эукариотических векторах и повсеместно используется для клонирования фрагментов ДНК.
Целью данной работы было получение и изучение некоторых свойств рестриктазы ZraI из бактерии Zoogloea ramigera 11, которая является ложным изошизомером AatII.

 

УСЛОВИЯ ЭКСПЕРИМЕНТА

Штамм-продуцент эндонуклеазы рестрикции выявлен нами в результате поиска рестриктаз в природных изолятах по ранее описанной методике [3,4]. Морфологические и физиолого-биохимические свойства штамма изучали с использованием методик [5]. Определение штамма до вида проводили по определителю [6].
Z. ramigera 11 выращивали до насыщения в ферментере 1601-013 (LKB, Швеция) при 30° в 10л среды, содержащей 1% триптона (Organotechnie, Франция), 0,5% дрожжевого экстракта (той же фирмы), 0,05% MgCl2 и 0,001%) тиамина, при pH 7,5 с аэрацией 5 л/мин и перемешиванием 200 об/мин. Клетки осаждали центрифугированием и замораживали. Получили 56 г биомассы с активностью рестриктазы ZraI 20000 ед/г.
За единицу активности ZraI принимали полное специфическое расщепление ферментом 1-го мкг ДНК фага λ за 1 ч при 37° в 20 мкл буфера В: 10 мМ трис-НСl, pH 7,6, 10 мМ MgCl2, 1 мМ дитиотреитол (ДТТ). Фрагментацию ДНК выявляли горизонтальным электрофорезом в 1%-ной агарозе в трис-ацетатном буфере с этидийбромидом (0,5 мг/л) при напряжении 5 В/см за 1,5 ч по методике [7].
Выделение рестриктазы ZraI проводили при 4° в 10 мМ трис-НСl (pH 7,5), в присутствии 7 мМ меркаптоэтанола, 1 мМ ЭДТА. 10 г клеток обрабатывали 0,05%-ным лизоцимом 1 ч в 30 мл 0,2 М NaCl, затем разрушали ультразвуком и осветляли центрифугированием 45 мин при 15000 об/мин. Экстракт пропускали через колонку с фосфоцеллюлозой P11 (Whatman, Англия) объемом 20 мл. Колонку промывали 0,1 М NaCl, затем градиентом NaCl от 0,1 до 0,8 М объемом 200 мл, элюат собирали в 50 пробирок. Фракции 7—21, содержащие фермент, объединяли, диализовали и наносили на колонку с 4 мл гепарин-сефарозы (Sigma, США). Фермент смывали в градиенте NaCl от 0 до 0,6 М объемом 120 мл в 40 пробирок. Фракции 15—23 диализовали и наносили на колонку с 4 мл целлюлозы DE-52 (Whatman, Англия). Фермент смывали в градиенте NaCl от 0 до 0,6 М объемом 60 мл в 30 пробирок. Фракции 6 — 15 диализовали против 0,1 М NaCl и наносили на колонку с 5 мл фосфоцеллюлозы Р11. Фермент смывали в градиенте NaCl от 0,1 до 0,5 М объемом 80 мл в 30 пробирок. Фракции 20 — 23 объединили и диализовали против буфера с 50%-ным глицерином и хранили при -20°.
Оптимальные условия проявления активности рестриктазы определяли путем расщепления ДНК фага λ, (50 мкг/мл в 50 мкл) при 37° и 55° в 5 стандартных буферных растворах: буфер В — 10 мМ трис-НСl (pH 7,6 при 25°), 10 мМ MgCl2 и 1 мМ ДТТ; буфер G —10 мМ трис-НСl (pH 7,6), 10 мМ MgCl2, 50 мМ NaCl и 1 мМ ДТТ; буфер О — 50 мМ трис-НСl (pH 7,6), 10 мМ MgCl2, 100 мМ NaCl и 1 мМ ДТТ; буфер W — 10 мМ трис-НСl (pH 8,5), 10 мМ MgCl2, 100 мМ NaCl и 1 мМ ДТТ; буфер Y — 33 мМ трис-ацетат, pH 7,9, 10 мМ ацетат магния, 66 мМ ацетат калия и 1 мМ ДТТ. Инкубацию проб проводили 1 ч и анализировали с помощью электрофореза.
Для определения места расщепления ДНК рестриктазой ZraI использовали дуплекс, для которого были синтезированы олигодезоксирибонуклеотиды по методике [8]. По методикам [7] каждую цепь метили по 5'-концу при помощи Т4 полинуклеотидкиназы и γ-32Р-АТР (4 Ки/ммоль, АОЗТ "Биосан", г. Новосибирск) и гибридизовали с немеченой комплиментарной цепью. Полученные таким образом меченые модификации дуплекса расщепляли рестриктазами, разделяли фрагменты с помощью электрофореза в 20%-ном ПААГ с 6 М мочевиной и радиоавтографировали. Для выявления фрагментов нуклеотидов после электрофоретического разделения дуплекс кроме того гидролизовали экзонуклеазой III из Е. coli.
Препараты ферментов и ДНК, использованные в работе, произведены в ООО "СибЭнзим" (г. Новосибирск).

 

РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ

Бактериальный штамм-продуцент фермента ZraI имеет следующие характеристики. Клетки — подвижные палочки размером (0,6—0,8)х(1,5—2) мкм, грамотрицательные, спор не образуют. Штамм — аэробный, каталазоотрицательный, оксидазоположительный, не восстанавливает нитрат в нитрит. На питательном агаре рост колоний стимулировали (без образования кислоты) 2%-ная глюкоза, мальтоза, сахароза, сорбит и маннит, но не глицерин, ацетат, этанол, дульцит, лактоза, арабиноза и рамноза. Рост отсутствовал на минимальном агаре с добавками углеводов. Культура росла при температуре от 5 до 30° при концентрации NaCl от 0 до 0,5% и pH 7—7,7. В питательном бульоне Лурия без встряхивания культура образовывала гомогенную муть и поверхностную пленку. Колонии на агаре с разбавленной в 4 раза средой вырастали за 3 дня при 25° и были круглые, 1—2 мм в диаметре, выпуклые, гладкие, блестящие, прозрачные. При старении колоний их центры темнели. Штамм идентифицировали по определителю [6] как вид бактерии Z. ramigera 11, его рестриктазу назвали ZraI по номенклатуре [9].
Биомассу Z. ramigera 11 выращивали при аэрации в модифицированном бульоне Лурия. Из 1 л получали 5,6 г клеток с активностью ZraI 20000 ед/г. Фермент выделяли из клеточного экстракта путем последовательных хроматографических процедур на колонках с фосфоцеллюлозой P11, гепарин-сефарозой, целлюлозой ДЕ-52. При выходе 9% получали 2,5 мл препарата ZraI с активностью 7000 ед/мл.
Оптимальные условия действия рестриктазы определяли в 5 стандартных буферных смесях при 37° и 55° (таблица 1).

 

Температура, °С
Активность ZraI в различных буферах, %
B
G
O
W
Y
37
100
75
12
25
75
55
75
75
6
12
75

Таблица 1. Относительная активность ZraI при расщеплении ДНК фага λ при 37° и 55° в пяти стандартных буферах



ZraI наиболее быстро расщепляла ДНК фага λ при 37° в 10 мМ трис-НСl, pH 7,6, 10 мМ MgCl2, 1 мМ ДТТ. Поскольку и при 55° обнаружена значительная активность, мы сравнили ее величину при температуре 30°, 37°, 50° и 60° в буфере В. Однако оптимальной оказалась температура 37°. Подобно прототипу AatII, рестриктаза ZraI активна в буфере Y и ингибируется 0,1 M NaCl (в буферах О и W).

 

Идентификация сайта ДНК, который узнает рестриктаза ZraI

 

 

 

Рис. 1. Идентификация сайта ДНК, который узнает рестриктаза ZraI:
1 - λ ДНК + ZraI;
2 - λ ДНК + ZraI и AatII;
3 - λ ДНК + AatII (узнает 5'-GACGTC-3');
М - маркер длины ДНК (λ. ДНК + BssTII)

 


Сайт ДНК, который узнает рестриктаза ZraI, идентифицировали по картине фрагментации ДНК фага λ, нуклеотидная последовательность которой известна [10]. На рис. 1 видно, что рестриктазы ZraI и AatII, а также их смесь идентично фрагментировали ДНК. Следовательно, ZraI узнает на ДНК тот же сайт, что и AatII (5'-GACGTC-3') и является ее изошизомером.
Место, по которому ZraI расщепляет ДНК, определяли на дезоксирибонуклеотидном дуплексе, содержащем сайт, который узнает рестриктаза (выделен).

5'-GCGTAAGTCCAGACGTC TGGACTAGTGCGC-3'
3'-CGCATTCAGGTCTGCAGACCTGATCACGCG-5'


На рис. 2 видно, что места, которые расщепляли рестриктазы AatII и ZraI, разделены двумя нуклеотидами. Если AatII расщепляет узнаваемую последовательность по 5'-GACGT↓C-3' , то
ZraI — по 5'-GAC↓GTC-3'. Таким образом, рестриктаза ZraI расщепляет ДНК с образованием тупых концов и является первым ложным изошизомером AatII. Она может найти более широкое применение в генетической инженерии, так как сшивка по тупым концам возможна не только для фрагментов, образованных ZraI, но и для многих других рестриктаз, а использование AatII такой возможности не дает.

 

Определение нуклеотидов, между которыми ZraI гидролизует узнаваемую последовательность в олигонуклеотидном дуплексе

 

Рис. 2. Определение нуклеотидов, между которыми ZraI гидролизует узнаваемую последовательность в олигонуклеотидном дуплексе:
а — верхняя цепь помечена 32Р по 5'-концу;
б — помечена нижняя цепь;
1 — исходный дуплекс;
2 — дуплекс + AatII (узнает и расщепляет 5'-GACGT↓C-3');
3 — экзонуклеаза III;
4 — ZraI

 

 

 

ЛИТЕРАТУРА

  1. Sugisaki, К, Maekawa, Y., Kanazawa, S., Takanami, M. // Nucleic Acids Res. — 1982. — V. 10. — P. 5747—5752.
  2. Sato, H., Suzuki, Т., Yamada, Y. // Agric. Biol. Chem. — 1990. —V. 54. —P. 3319—3325.
  3. Дедков B.C., Погребняк В.Б. Определение эндонуклеаз рестрикции в лизатах из отдельных колоний бактерий и измерение активности BamHI, PstI и MspI у бактерий, выращенных на питательном агаре и в бульоне: Тез. докл. 6-го рабочего совещания по программе ''Плазмида". — Пущино-на-Оке. — М., 1981. — С. 50—51.
  4. Дедков B.C., Дегтярёв С.Х. // Приклад, биохим. — 1991. — Т. 28. — С. 309—313.
  5. Руководство к практическим занятиям по микробиологии. / Под ред. Н. С. Егорова — М., 1995.
  6. Определитель бактерий Берджи. / Под ред. Дж. Хоулта и др.: 9-е издание в 2 томах: Пер. с англ. под ред. акад. РАН Г.А. Заварзина. — М., 1997.
  7. Маниатис Т., Фрыч Э., Сэмбрук Дж. Методы генетической инженерии. Молекулярное клонирование: Пер. с англ. — М., 1984.
  8. Горбунов Ю.А., Зиновьев В.В., Овечкина Л.Г. и др. // Биоорган, химия.—1987.—Т. 13. — С. 1629—1637.
  9. Smith, И.О., Nathans, D.// Mol. Biol.—1973.—V. 81.— P. 419—423.
  10. Sanger, F., Coulson, A.R., Hong, G.F., et al .// J. Mol. Biol.— 1982. —V. 162. — P. 729—773.